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第 32 筆
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論文名稱: | 山藥乳酸發酵液之抗氧化性和抗致突變性及對動物細胞生理活性之影響
| Studies on Antioxidation and Antimutagenicity of Lactic Acid Fermented Yams and Their Biological Activity on Mammalian Cells
研究生: | 沈嘉琪 Chia-Chi Shen
指導教授: | 潘崇良 Chong-Liang Pan
學位類別: | 碩士
學校名稱: | 國立台灣海洋大學
系所名稱: | 食品科學系
畢業學年度: | 91
語文別: | 中文
關鍵字: | 乳酸菌 lactic acid bacteria
| 抗致突變性 antimutagenicity
| 細胞生理活性 biology activity on cell
| 山藥 yam
| 抗氧化性 antioxidation
全文點閱次數: | 16

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電子檔1

論文頁數: | 155
摘要: | 本研究主要利用 A 組：Lb. plantarum CCRC10069 + Lb. plantarum CCRC12250，B 組：Lb. plantarum CCRC10069 + Lc. lactis CCRC12315 和 C 組：Lb. plantarum CCRC12250 + Lc. lactis CCRC12315 三組乳酸菌發酵四種山藥 (基隆、七堵、名間長紅及台農二號) 之 2% 水溶液，探討四種山藥發酵液在抗氧化性、抗致突變性以及對動物細胞生理活性等功能上之變化。四種 2% 山藥水溶液之發酵實驗顯示至 5-7 小時發酵終點時乳酸菌菌數約為 8.2-8.5 log CFU/mL，經由三種多醣分解酵素a-amylase (50 unit)、b-cellulase (50 unit) 及 a-amylase/b-cellulase (各 25 unit) 作用後，可使發酵液中之乳酸菌菌數提升至 8.7-8.9 log CFU/mL。抗氧化能力方面，四種山藥發酵液在濃度為 10 mg/mL 時，對於抑制血紅素催化亞麻油酸自氧化能力呈現 90% 以上之抑制能力，較未發酵之四種山藥水溶液為佳。經過多醣酵素降解之四種山藥發酵液對抑制亞麻油酸自氧化能力則會下降至 58-90%。在螯合亞鐵離子能力方面，四種山藥發酵液約呈現 60-95% 之螯合能力，經過多醣酵素降解之四種山藥發酵液則表現較低之螯合亞鐵離子能力 (50-81%)。在清除 DPPH 自由基之能力方面，無論經過或未經多醣酵素降解之四種山藥發酵液皆呈現大約 10-18% 之清除能力。毒性及致突變性試驗之結果顯示四種山藥發酵液對於菌株 TA98 及 TA100 未呈現毒性及致突變能力。在抗致突變性試驗方面，以經 B 組乳酸菌作用之名間長紅山藥發酵液及 C 組乳酸菌作用之台農二號山藥發酵液對 4NQO 於 TA98 產生之致突變性的抑制率較佳，約具有 61.2% 之抑制率。對B[a]P 於菌株 TA98 產生致突變性之抑制率，四種山藥發酵液呈現 33.6-48.7% 抑制率。對於4NQO作用於菌株 TA100 之抑制率以經 50 unit b-cellulase 處理之 C 組乳酸菌作用之七堵山藥發酵液表現較佳約為 86.0%；對B[a]P 作用於菌株 TA100 之抑制率，以經 25 unit a-amylase/b-cellulase 處理之 B 組乳酸菌作用之台農二號山藥發酵液表現較佳約為 87.1%。四種山藥發酵液與對照相組相比較時未能顯現對於免疫細胞株 HL-60、UMФ、THP-1 及 HB4C5 之促進或抑制生長能力。A 組乳酸菌發酵之七堵山藥發酵液與淋巴癌細胞株 K562 反應 24 小時後，對於該品系細胞具有致死能力，由細胞之 DNA 片段化分析判定反應應屬於細胞凋亡 (Apoptosis)。
| Three groups lactic acid bacteria (LAB), group A: Lb. plantarum CCRC10069 and CCRC12250, group B: Lb. plantarum CCRC12250 and Lc. lactis CCRC12315, and group C: Lb. plantarum CCRC12250 and Lc. lactis CCRC12315, fermented 2% aqueous solution of four yams (Keelung, Chidu, Mingjian, and Tainung No. 2).  The antioxidation and antimutagenicity characteristics of these four fermented yams and their effects on the biology activity on mammalian cells were studied.  In the fermentation experiments of four 2% yams aqueous solutions showed LAB count were 8.2-8.5 log CFU/mL.  Fermented yams solution were treated with 50 unit a-amylase, b-cellulase, and a-amylase/b-cellulase, the LAB count can be raised to 8.7-8.9 log CFU/mL.  In the antioxidative effect as measurement on inhibition of hemoglobin-induced linoleic acid oxidantion, four fermented yams solution with 10 mg/mL concentration obtained antioxidative activity > 90% inhibition that was better than the four yams aqueous solution without fermentation.  While four yams aqueous solution were pretreated with polysaccharide-digesting enzymes and followed by fermention with group A, B, or C LAB, the inhibition of linoleic acid oxidation were decreased to 58-90%.  As to the ability of chelating on Fe (II) ion, the results indicated that four yams fermented products performed 60-95% chelating effect on Fe (II) ion.  When four yams aqueous solutions were pretreated with polysaccharide-digesting enzymes, their ability on chelating Fe (II) ion were decreased to 50-81%.  The ability for scavenging DPPH free radical was examined, and the results showed that no matter treated with or without polysaccharide-digesting enzyme, the four yams fermented products present 10-18% scavenging ability on DPPH free radicals.  The results on the toxicity and mutagenicity tests showed no significant difference.  The inhibition of Sal. typhimurium reversion induced by 4NQO performed by Mingjian yam fermented by group B LAB and Tainung No. 2 yam fermented by C group LAB were both 61.2%.  Four yams fermented products showed inhibition on Sal. typhimurium TA98 reversion that induced by B[a]P, the antimutagenicity observed were 33.6-48.7%. Chidu yam was pretreated with 50 unit b-cellulase and then group C LAB inhibition effect on Sal. typhimurium TA100 mutation that induced by 4NQO, Tainung No. 2 yam aqueous solution pretreated with 50 unit a-amylase/b-cellulase group B LAB have good performance on inhibiting Sal. typhimurium TA100 mutation with induced by B[a]P, the antimutagenicity observed was 87.1%.  The growth-promotion or -inhibition ability of four yams fermented to immuno-cells line, HL-60, UMФ, THP-1, and HB4C5, showed no significant difference to the control groups. Chidu yam fermented by group A LAB could decrease the viability of K562 cell after 24 hours incubation.  The results on DNA fragmentation experiment indicate that the cause of the death of K562 cell could be apoptosis.
論文目次: | 目錄    i
| 表目錄    vi
| 圖目錄    ix
| 中文摘要    xiii
| 英文摘要    xiv
| 壹、前言    1
| 貳、文獻整理    3
| 一、山藥簡介    3
| 1. 山藥種類、型態與分佈    3
| 2. 山藥之成分與營養價值    5
| (1) 一般成分    5
| (2) 抗性澱粉    5
| 3. 山藥之生理功能    6
| (1) 歷代醫療價值記載    6
| (2) 降膽固醇、降血脂質    6
| (3) 降血糖    7
| (4) 抗細胞增生    8
| (5) 增強免疫力    8
| 二、乳酸菌簡介    9
| 1. 乳酸菌之定義    9
| 2. 乳酸菌之發酵特性    9
| 3. 乳酸菌之生理功能    9
| (1) 腸道屏蔽作用    10
| (2) 降低血膽固醇    10
| (3) 活化免疫系統    11
| (4) 抗癌性    11
| 三、抗氧化能力測定    12
| 1. 自由基與活性氧之形成    12
| 2. 氧化傷害    13
| 3. 抗氧化物的種類    13
| (1) 自由基終止型    13
| (2) 還原劑或氧清除劑    14
| (3) 單重態氧抑制劑    14
| (4) 金屬螯合劑    14
| (5) 抗氧化酵素    14
| 4. 山藥之抗氧化性    15
| 四、Ames test 之檢測方法    15
| 1. Histidine requirement    16
| 2. rfa mutation    17
| 3. uvrB mutation    17
| 4. R-factor    17
| 5. pAQ1 plasmid    17
| 五、抗致突變物之作用機制    17
| 1. 去致突變物    18
| (1) 防止致突變物生成之抑制劑    18
| (2) 降低致突變物造成DNA傷害之阻斷劑    18
| a. 致原致突變物之不活化作用    18
| b. 對代謝活化酵素系統之抑制作用    18
| c. 對致突變物代謝活化物之不活化作用    19
| d. 促進解毒代謝系統    19
| (3) 抗氧化劑    19
| 2. 生物抗致突變物    19
| (1) 作用於受損 DNA 修補之化合物    19
| (2) 抑制腫瘤促進與增殖作用之抑制劑    20
| 六、免疫活性物質之評估方法    20
| 1. 免疫細胞之活化    20
| (1) 對 T 細胞的活化    20
| (2) 自然殺手細胞的活化    21
| (3) 吞噬細胞的活化    21
| (4) 巨噬細胞細胞膜上甘露醣接受器之功能    21
| 2. 免疫活性因子的分析方法    22
| (1) 細胞存活率 (MTT還原分析法)    22
| (2) 毒胞活性一氧化氮 (NO) 產生量分析法    22
| (3) 吞噬球呼吸爆 (Respiratory burst) NBT還原分析法    23
| 參、實驗設計    24
| 肆、材料方法    26
| 一、實驗材料    26
| 1. 山藥    26
| 2. 試驗菌株及細胞株    26
| 3. 培養基及藥品    27
| 4. 材料及儀器設備    30
| 二、實驗方法    31
| 1. 乳酸菌之保存、活化及生長    31
| (1) 菌株之保存    31
| (2) 菌株之活化    31
| (3) 菌株生長測定    31
| a. 菌液酸鹼度之測定    31
| b. 菌液光學密度值之測定    31
| c. 乳酸菌菌數之測定    31
| 2. 山藥凍乾粉末之一般成分分析    31
| (1) 水分含量    31
| (2) 灰分含量    32
| (3) 粗脂肪含量    32
| (4) 粗蛋白含量    32
| 3. 山藥發酵液之製備及分析    32
| (1) 山藥發酵液製備    32
| (2) 山藥經多醣酵素分解後之發酵液製備    32
| (3) 山藥水溶液及其降解液經膠體過濾層析分析之
| 測定    33
| (4) 微生物菌相之測定    33
| (5) 酸鹼值 (pH 值)    33
| (6) 總醣量    34
| (7) 還原醣    34
| 4. 山藥發酵液之抗氧化測定    34
| (1) 抑制血紅素催化亞麻油酸自氧化之測定    34
| (2) 螯合亞鐵離子能力之測定    34
| (3) 清除DPPH自由基能力之測定    35
| 5. 山藥發酵液之抗致突變性測定    35
| (1)    Salmonella typhimurium TA 98及TA 100之保存與
| 活化    35
| a. 菌株TA 98及TA 100之基因特性    35
| b. 菌株TA 98及TA 100之保存    35
| c. 菌株TA 98及TA 100之活化    36
| (2)    Salmonella typhimurium TA 98及TA 100基因型態
| 之確認    36
| a. 組胺酸需求性之確認    36
| b. rfa突變測試    36
| c. uvrB突變測試    36
| d. R-factor之測試    37
| (3) 毒性試驗    37
| (4) 致突變實驗    37
| (5) 抗致突變實驗    38
| (6) 統計分析    38
| 6. 山藥發酵液對動物細胞之生理活性試驗    39
| (1) 細胞之培養    39
| (2) 全醣量分析    39
| (3) 細胞存活率 (MTT assay)    39
| (4) 測定 DNA 片段化 (DNA fragmentation test)    40
| 伍、結果與討論    41
| 一、四種山藥及其冷凍乾燥粉末之一般成分分析    41
| 二、以三種乳酸菌之菌種組合發酵四種山藥水溶液    41
| 1.    乳酸菌菌株之選用    41
| 2.    四種山藥水溶液之發酵實驗結果    42
| 3.    利用多醣分解酵素降解四種山藥水溶液    43
| (1) 還原醣含量變化    44
| (2) 膠體過濾層析分析    44
| 4.    經多醣分解酵素分解之四種山藥水溶液發酵實驗結果    46
| 三、四種山藥水溶液及其山藥發酵液在抗氧化性之探討    47
| 1.    抑制血紅素催化亞麻油酸自氧化之能力    47
| 2.    螯合亞鐵離子能力之測定    48
| 3.    清除 DPPH 自由基之能力    49
| 四、四種山藥水溶液及其山藥發酵液之抗致突變性探討    49
| 1.    Salmonella typhimurium TA98 及 TA100 試驗菌株基
| 因型態之確認    49
| (1)    組胺酸需求性 (Histidine requirement) 之確認    49
| (2)    rfa 突變 (rfa mutation) 之測試    50
| (3)    uvr B 突變 (uvr B mutation) 之測試    50
| (4)    R-factor 之測試    50
| 2.    毒性試驗    50
| 3.    致突變試驗    50
| 4.    抗致突變性試驗    51
| 五、四種山藥發酵液對動物細胞生理活性之影響    55
| 1.    對免疫細胞株 HL-60、UMФ、HB4C5 及 THP-1 之
| 細胞存活率影響    55
| 2.    對淋巴癌細胞株 K562 之細胞存活率影響    56
| 3.    以細胞顯微鏡照相圖及利用 DNA 片段化觀察淋巴癌
| 細胞株 K562 之死亡現象    57
| 陸、結論    59
| 柒、參考文獻    61
|
|
|
|
|
| 表目錄
| 表一、    四種山藥及其冷凍乾燥粉末之一般成分分析    75
| 表二、    2% 基隆山藥水溶液於乳酸菌發酵期間之 pH 值、總
| 醣量與微生物菌數變化    77
| 表三、    2% 七堵山藥水溶液於乳酸菌發酵期間之 pH 值、總
| 醣量與微生物菌數變化    78
| 表四、    2% 名間長紅山藥水溶液於乳酸菌發酵期間之 pH 值、
| 總醣量與微生物菌數變化    79
| 表五、    2% 台農二號山藥水溶液於乳酸菌發酵期間之 pH 值、
| 總醣量與微生物菌數變化    80
| 表六、    經 50 unit a-amylase 處理之 2% 基隆山藥水溶液於
| 乳酸菌發酵期間之 pH 值、還原醣與微生物菌數變化    100
| 表七、    經 50 unit a-amylase 處理之 2% 七堵山藥水溶液於
| 乳酸菌發酵期間之 pH 值、還原醣與微生物菌數變化    101
| 表八、    經 50 unit a-amylase 處理之 2% 名間長山藥水溶液
| 於乳酸菌發酵期間之 pH 值、還原醣與微生物菌數變
| 化    102
| 表九、    經 50 unit a-amylase 處理之 2% 台農二號山藥水溶
| 液於乳酸菌發酵期間之 pH 值、還原醣與微生物菌數
| 變化    103
| 表十、    經 50 unit b-cellulase 處理之 2% 基隆山藥 (2%) 水
| 溶液於乳酸菌發酵期間之 pH 值、還原醣與微生物菌
| 數變化    104
| 表十一、  經 50 unit b-cellulase 處理之 2% 七堵山藥水溶液於
| 乳酸菌發酵期間之 pH 值、還原醣與微生物菌數變化    105
| 表十二、  經 50 unit b-cellulase 處理之 2% 名間長紅山藥水溶
| 液於乳酸菌發酵期間之 pH 值、還原醣與微生物菌數
| 變化    106
| 表十三、  經 50 unit b-cellulase 處理之台農二號山藥 (2%) 水溶
| 液於乳酸菌發酵期間之 pH 值、還原醣與微生物菌數
| 變化    107
| 表十四、  經 25 unit a-amylase 及 b-cellulase 處理之 2% 基隆
| 山藥水溶液於乳酸菌發酵期間之 pH 值、還原醣與微
| 生物菌數變化    108
| 表十五、  經 25 unit a-amylase 及 b-cellulase 處理之 2% 七堵
| 山藥水溶液於乳酸菌發酵期間之 pH 值、還原醣與微
| 生物菌數變化    109
| 表十六、  經 25 unit a-amylase 及 b-cellulase 處理之 2% 名間
| 長紅山藥水溶液於乳酸菌發酵期間之 pH 值、還原醣
| 與微生物菌數變化    110
| 表十七、  經 25 unit a-amylase 及 b-cellulase 處理之 2% 台農
| 二號山藥水溶液於乳酸菌發酵期間之 pH 值、還原醣
| 與微生物菌數變化    111
| 表十八、  四種山藥水溶液及其經過乳酸菌發酵後所得之四種山
| 藥發酵液對 Salmonella typhimurium TA98 及 TA100
| 之毒性評估    124
| 表十九、  經 50 unit a-amylase 處理之四種山藥水溶液及其經過
| 乳酸菌發酵後所得之四種山藥發酵液對 Salmonella
| typhimurium TA98 及TA100 之毒性評估    125
| 表二十、  經 50 unit b-cellulase 處理之四種山藥水溶液及其經過
| 乳酸菌發酵後所得之四種山藥發酵液對 Salmonella
| typhimurium TA98 及 TA100 之毒性評估    126
| 表二十一、經 25 unit a-amylase 及 b-cellulase 處理之四種山藥
| 水溶液及其經過乳酸菌發酵後所得之四種山藥發酵液
| 對Salmonella typhimurium TA98 及 TA100 之毒性評
| 估    127
| 表二十二、四種山藥水溶液及其經過乳酸菌發酵後所得之四種山
| 藥發酵液對 Salmonella typhimurium TA98 及 TA100
| 之致突變性評估    128
| 表二十三、經 50 unit a-amylase 處理之四種山藥水溶液及其經過
| 乳酸菌發酵後所得之四種山藥發酵液對 Salmonella
| typhimurium TA98 及TA100 之致突變性評估    129
| 表二十四、經 50 unit b-cellulase 處理之四種山藥水溶液及其經過
| 乳酸菌發酵後所得之四種山藥發酵液對 Salmonella
| typhimurium TA98 及 TA100 之致突變性評估    130
| 表二十五、經 25 unit a-amylase 及 b-cellulase 處理之四種山藥
| 水溶液及其經過乳酸菌發酵後所得之四種山藥發酵液
| 對Salmonella typhimurium TA98 及 TA100 之致突變
| 性評估    131
| 表二十六、四種山藥水溶液及其經過乳酸菌發酵後所得之四種山
| 藥發酵液對 4NQO 之抗致突變性評估    132
| 表二十七、經 50 unit a-amylase 處理之四種山藥水溶液及其經過
| 乳酸菌發酵後所得之四種山藥發酵液對 4NQO 之抗致
| 突變性評估    133
| 表二十八、經 50 unit b-cellulase 處理之四種山藥水溶液及其經過
| 乳酸菌發酵後所得之四種山藥發酵液對 4NQO 之抗致
| 突變性評估    134
| 表二十九、經 25 unit a-amylase 及 b-cellulase 處理之四種山藥
| 水溶液及其經過乳酸菌發酵後所得之四種山藥發酵液
| 對 4NQO 之抗致突變性評估    135
| 表三十、  四種山藥水溶液及其經過乳酸菌發酵後所得之四種山
| 藥發酵液對 B[a]P 之抗致突變性評估    136
| 表三十一、經 50 unit a-amylase 處理之四種山藥水溶液及其經過
| 乳酸菌發酵後所得之四種山藥發酵液對B[a]P 之抗致
| 突變性評估    137
| 表三十二、經 50 unit b-cellulase 處理之四種山藥水溶液及其經過
| 乳酸菌發酵後所得之四種山藥發酵液對 B[a]P 之抗致
| 突變性評估    138
| 表三十三、經 25 unit a-amylase 及 b-cellulase 處理之四種山藥水
| 溶液及其經過乳酸菌發酵後所得之四種山藥發酵液
| 對 B[a]P 之抗致突變性評估    139
|
|
| 圖目錄
| 圖一、    十二株乳酸菌發酵 2% 基隆山藥水溶液期間之乳酸菌
| 菌數及 pH 值變化    76
| 圖二、    四種 2% 山藥水溶液經 25 或 50 unit a-amylase分解
| 後之還原醣變化    81
| 圖三、    四種 2% 山藥水溶液經 25 或 50 unit b-cellulase分解
| 後之還原醣變化    82
| 圖四、    四種 2% 山藥水溶液經 25 或 50 unit a-amylase 和
| b-cellulase 分解後之還原醣變化    83
| 圖五、    2% 基隆山藥水溶液中醣類與蛋白質組成物之 Sephacryl
| S-300 膠體過濾層析圖    84
| 圖六、    2% 七堵山藥水溶液中醣類與蛋白質組成物之 Sephacryl
| S-300 膠體過濾層析圖    85
| 圖七、    2% 名間長紅山藥水溶液中醣類與蛋白質組成物之
| Sephacryl S-300 膠體過濾層析圖    86
| 圖八、    2% 台農二號水溶液中醣類與蛋白質組成物之 Sephacryl
| S-300 膠體過濾層析圖    87
| 圖九、    經 50 unit a-amylase 降解 2% 基隆山藥水溶液中醣類
| 與蛋白質組成組之 Sephacryl S-300 膠體過濾層析圖    88
| 圖十、    經 50 unit a-amylase 降解 2% 七堵山藥水溶液中醣類
| 與蛋白質組成組之 Sephacryl S-300 膠體過濾層析圖    89
| 圖十一、  經 50 unit a-amylase 降解 2% 名間長紅山藥水溶液中
| 醣類與蛋白質組成組之 Sephacryl S-300 膠體過濾層析
| 圖    90
| 圖十二、  經 50 unit a-amylase 降解 2% 台農二號山藥水溶液中
| 醣類與蛋白質組成組之 Sephacryl S-300 膠體過濾層析
| 圖    91
| 圖十三、  經 50 unit b-cellulase 降解 2% 基隆山藥水溶液中醣類
| 與蛋白質組成組之 Sephacryl S-300 膠體過濾層析圖    92
| 圖十四、  經 50 unit b-cellulase 降解 2% 七堵山藥水溶液中醣類
| 與蛋白質組成組之 Sephacryl S-300 膠體過濾層析圖    93
| 圖十五、  經 50 unit b-cellulase 降解 2% 名間長紅山藥水溶液中
| 醣類與蛋白質組成組之 Sephacryl S-300 膠體過濾層析
| 圖    94
| 圖十六、  經 50 unit b-cellulase 降解 2% 台農二號山藥水溶液中
| 醣類與蛋白質組成組之 Sephacryl S-300 膠體過濾層析
| 圖    95
| 圖十七、  經 25 unit a-amylase 和 b-cellulase 降解 2% 基隆山藥
| 水溶液中醣類與蛋白質組成組之 Sephacryl S-300膠體
| 過濾層析圖    96
| 圖十八、  經 25 unit a-amylase 和 b-cellulase 降解 2% 七堵山藥
| 水溶液中醣類與蛋白質組成組之 Sephacryl S-300膠體
| 過濾層析圖    97
| 圖十九、  經 25 unit a-amylase 和 b-cellulase 降解 2% 名間長紅
| 山藥水溶液中醣類與蛋白質組成組之 Sephacryl S-300
| 膠體過濾層析圖    98
| 圖二十、  經 25 unit a-amylase 和 b-cellulase 降解 2% 台農二號
| 山藥水溶液中醣類與蛋白質組成組之 Sephacryl S-300
| 膠體過濾層析圖    99
| 圖二十一、四種山藥水溶及其經三組乳酸菌發酵之發酵液對抑制血
| 紅素催化亞麻油酸自氧化能力之影響    112
| 圖二十二、經 50 unit a-amylase 四種山藥水溶及其經三組乳酸菌
| 發酵之發酵液對抑制血紅素催化亞麻油酸自氧化能力
| 之影響    113
| 圖二十三、經 50 unit b-cellulase 四種山藥水溶及其經三組乳酸菌
| 發酵之發酵液對抑制血紅素催化亞麻油酸自氧化能力
| 之影響    114
| 圖二十四、經 25 unit a-amylase 和 b-cellulase 四種山藥水溶及其
| 經三組乳酸菌發酵之發酵液對抑制血紅素催化亞麻油
| 酸自氧化能力之影響    115
| 圖二十五、四種山藥水溶及其經三組乳酸菌發酵之發酵液對螯合
| 亞鐵離子能力之測定    116
| 圖二十六、經 50 unit a-amylase 四種山藥水溶及其經三組乳酸菌
| 發酵之發酵液對螯合亞鐵離子能力之測定    117
| 圖二十七、經 50 unit b-cellulase 四種山藥水溶及其經三組乳酸菌
| 發酵之發酵液螯合亞鐵離子能力之測定    118
| 圖二十八、經 25 unit a-amylase 和 b-cellulase 四種山藥水溶及其
| 經三組乳酸菌發酵之發酵液對螯合亞鐵離子能力之測定    119
| 圖二十九、四種山藥水溶及其經三組乳酸菌發酵之發酵液對 DPPH
| 自由基清除之能力    120
| 圖三十、  經 50 unit a-amylase 四種山藥水溶及其經三組乳酸菌
| 發酵之發酵液對對 DPPH 自由基清除之能力    121
| 圖三十一、經 50 unit b-cellulase 四種山藥水溶及其經三組乳酸菌
| 發酵之發酵液對對 DPPH 自由基清除之能力    122
| 圖三十二、經 25 unit a-amylase 和 b-cellulase 四種山藥水溶及其
| 經三組乳酸菌發酵之發酵液對對 DPPH 自由基清除之
| 能力    123
| 圖三十三、2% 基隆山藥水溶液對細胞株 HL-60、UMФ、THP-1
| 及 HB4C5 成長之影響    140
| 圖三十四、經 A 組乳酸菌發酵之 2% 基隆山藥發酵液對細胞株HL-60、UMФ、THP-1 及 HB4C5 成長之影響    141
| 圖三十五、經 B 組乳酸菌發酵之 2% 基隆山藥發酵液對細胞株HL-60、UMФ、THP-1 及 HB4C5 成長之影響    142
| 圖三十六、經 C 組乳酸菌發酵之 2% 基隆山藥發酵液對細胞株HL-60、UMФ、THP-1 及 HB4C5 成長之影響    143
| 圖三十七、四種 2% 山藥水溶液對細胞株 K562 成長之影響    144
| 圖三十八、經 A 組乳酸菌發酵之 2% 基隆山藥發酵液對細胞株
| K562 成長之影響    145
| 圖三十九、經 B 組乳酸菌發酵之 2% 基隆山藥發酵液對細胞株
| K562 成長之影響    146
| 圖四十、  經 C 組乳酸菌發酵之 2% 基隆山藥發酵液對細胞株
| K562 成長之影響    147
| 圖四十一、淋巴癌細胞株 K562 添加四種 2% 山藥水溶液培養
| 24 小時之細胞顯微照相圖 (Í 200 倍)    148
| 圖四十二、淋巴癌細胞株 K562 添加四種 2% 山藥水溶液培養
| 24 小時之 DNA 片段化電泳圖及細胞螢光顯微照相
| 圖    149
| 圖四十三、淋巴癌細胞株 K562 添加四種經 A 組乳酸菌作用之
| 2% 山藥發酵液培養 24 小時之細胞顯微照相圖 (Í
| 200 倍)    150
| 圖四十四、淋巴癌細胞株 K562 添加四種經 A 組乳酸菌作用之
| 2% 山藥發酵液培養 24 小時之 DNA 片段化電泳圖
| 及細胞螢光顯微照相圖    151
| 圖四十五、淋巴癌細胞株 K562 添加四種經 B 組乳酸菌作用之
| 2% 山藥發酵液培養 24 小時之細胞顯微照相圖 (Í
| 200 倍)    152
| 圖四十六、淋巴癌細胞株 K562 添加四種經 B 組乳酸菌作用之
| 2% 山藥發酵液培養 24 小時之 DNA 片段化電泳圖
| 及細胞螢光顯微照相圖    153
| 圖四十七、淋巴癌細胞株 K562 添加四種經 C 組乳酸菌作用之
| 2% 山藥發酵液培養 24 小時之細胞顯微照相圖 (Í
| 200 倍)    154
| 圖四十八、淋巴癌細胞株 K562 添加四種經 C 組乳酸菌作用之
| 2% 山藥發酵液培養 24 小時之 DNA 片段化電泳圖
| 及細胞螢光顯微照相圖    155
|
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2010 年 3 月 8 日 23:02