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第 4 筆
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論文名稱: | Aeromonas salmonicida MAEF 108 所產鹿角菜膠酶基因轉殖至Lactococcus lactis NZ3900中表現之探討
| The Study of Cloning and Expression  of Carrageenase gene on Lactoccus latis NZ3900 that devived from Aeromonas salmonicida MAEF 108
研究生: | 朱家宏
指導教授: | 潘崇良 Chorng-Liang
學位類別: | 碩士
學校名稱: | 國立臺灣海洋大學
系所名稱: | 食品科學系
學號: | m98320051
畢業學年度: | 99
語文別: | 中文
關鍵字: | Lactcoccus lactis NZ3900 Lactcoccus lactis NZ3900
| NICE 系統 Nisin Controlled Expression system
| 鹿角菜膠 Carrageenan
| 鹿角菜膠酶 Carrageenase
全文影像連結: | | (本論文20140729開放校外瀏覽)
| 論文全文(pdf)

論文頁數: | 82
摘要: | 本研究在於探討將 Aeromonas salmonicida MAEF 108 Carrageenase基因 carI 利用 TA cloning 轉形至大腸桿菌中，再利用轉形成功之大腸桿菌轉殖株以限制酶選殖方式轉形至乳酸菌中，並測試乳酸菌轉殖株NZ3900-carI 之菌株質體穩定性、Nisin 耐受性、Nisin 誘導 carI表現、及其所產 Carrageenase 之活性變化。將carI 基因引子對分別於 5，加入限制酶 KpnI 切位及3，加入限制酶 sacI 切位，並以聚合酶反應 (Polymerase chain reaction, PCR)  擴增菌株 MAEF 108 染色體中carI 基因之 DNA 片段，將推論所得之 carI 基因之 DNA 片段經 A-tailing 處理後，再與 pGEM-TTM 載體 (amp+)組合成為重組載體I ，並於洋菜糖膠電泳片上之 4 kb 處確認重組載體I。重組載體I 經熱休克轉形至 E. coli DH5勝任細胞後，共篩得 17 株 amp+ 轉殖株，挑選一株轉殖株之重組載體I 經 PCR 擴增及限制酶剪切後，於洋菜糖膠電泳片上之 1 kb 處初步確認為 carI 基因之 DNA 片段。大腸桿菌轉殖株之重組載體I 及乳酸菌載體 pNZ8149皆以限制酶 (SacI 和 KpnI) 剪切後，利用連接反應組合成為重組載體II，重組載體II 以電穿孔法轉形至 Lactococcus lactis NZ3900。乳酸菌轉殖株利用 100oC沸水破細胞後，經 PCR 擴增後即可於洋菜糖膠電泳片上之 1 kb 處初步確認 carI基因片段，篩得 2 株 lac+ 轉殖株，並自乳酸菌轉殖株抽取質體與經限制酶剪切以及利用洋菜糖膠電泳進一步確認為 carI 基因之DNA。取乳酸菌轉殖株 NZ3900-carI 之重組載體II carI  基因片段進行定序，再與菌株 MAEF 108 carI 基因之原始序列作比對後，發現只有 4 個鹼基對有異。乳酸菌轉殖株 NZ3900-carI 於 M17G 和M17L 培養液中分別連續轉接 3 次，其質體穩定度分別為 80% 和 87%。轉殖株 NZ3900-carI之Nisin 耐受性方面，當轉殖株NZ3900-carI 在 Nisin 濃度大於或等於 100 ng/mL 培養液培養時，其生長會受到抑制。將 轉殖株NZ3900-carI 培養於 Nisin 濃度為 5 ng/mL 於 40oC下培養10 hr 可獲得最佳被誘導酵素活性，其 Carrageenase 之比活性為 0.0323 U/mg。以轉殖株NZ3900-carI 超音波破細胞之最佳處理條件為功率 15 W、破碎時間 5 min、超音波作用時間 3 sec 和休息時間 6 sec、菌量濃度 0.033 g/mL (溼重)。胞內粗酵素液之為最適溫度及 pH 值分別是 40oC 及 pH 7.0。將轉殖株NZ3900-carI 之胞內粗酵素液放於 pH 7.2 之緩衝溶液中存放於4-50 oC 下 2 hr，其 Carrageenase 相對活性皆有85% 以上。pH 值穩定性保存於 4oC 下 2 hr 只有 pH 7.0 和8.0 測得到活性，由此可知 Carrageenase 對 pH 值較為敏感。測試之金屬離子中Sn2+ 和 Zn2+ 可將 Carrageenase 之相對酵素活性分別提升至 138.68% 和137.56%，而金屬離子中之 Ba2+ 和 Mn2+ 可完全抑制 Carrageenase 活性。
論文目次: | 目錄
| 目錄    i
| 表目錄    v
| 圖目錄    vi
| 附錄目錄    viii
| 摘要    ix
| 英文摘要 (Abstract)    xi
| 壹、前言    1
| 貳、文獻整理    3
| I.      鹿角菜膠    3
| I-1.  來源    3
| I-2.  成分及化學構造    3
| I-3.  黏度特性及安定性    4
| I-4.  成膠機制    4
| I-5.  與蛋白質的交互作用    5
| I-6.  鹿角菜膠之應用    5
| II.      鹿角菜膠酶 (Carrageenase)      5
| III.      鹿角菜膠之生化特性    6
| III-1.  溫度與pH 值    6
| III-2.  分子量    6
| III-3.  生產鹿角菜膠酶酵素活性    7
| IV.      鹿角菜膠酶基因以大腸桿菌做為宿主之轉殖系統    7
| V.  乳酸菌    8
| V-1.  乳酸菌的定義    8
| V-2.    Nisin Controlled Expression (NICE) 表現系統    8
| V-3.  乳酸菌之宿主細胞 及質體 (pNZ8149)    9
| 參、實驗設計    10
| 肆、實驗材料與方法    11
| I.      實驗材料    11
| I-1.    實驗菌株    11
| I-2.    試驗藥品    11
| I-2-A.    藥品    11
| I-2-B.    載體    12
| I-2-C.    引子    13
| I-2-D.    聚合酶鏈鎖反應試劑    13
| I-2-E.    限制酶及蛋白酶抑制劑    13
| I-2-F.    蛋白質及DNA 萃取純化套裝試劑    13
| I-2-G.    電泳標準品    14
| I-2-H.    培養基組成    14
| I-2-I.    鹿角菜膠酶反應基質    16
| I-2-J.    DNS 溶液    16
| I-2-K.    電泳膠片配置    16
| I-2-L.    電泳溶液    17
| I-2-M.    無菌過濾    17
| I-3.    儀器設備    18
| II.        實驗方法    19
| II-1.    菌株保存與活化    19
| II-1-A.  菌株保存    19
| II-1-B.  菌株活化    19
| II-2.    鹿角菜膠酶之活性測定    19
| II-3.    鹿角菜膠酶基因之 TA cloning    20
| II-3-A.    MAEF 108 染色體 DNA 的萃取純化    20
| II-3-B.    TA cloning 引子設計    20
| II-3-C.    TA cloning 之聚合酶鏈鎖反應    20
| II-3-D.    大腸桿菌重組載體之製備    21
| II-3-E.    E. coli DH5勝任細胞之製作    22
| II-3-F.    熱休克轉形    22
| II-3-G.    大腸桿菌質體之抽取    22
| II-3-H.    利用 PCR 確認插入大腸桿菌重組載體基因片段    23
| II-4.    鹿角菜膠酶基因限制酶選殖    23
| II-4-A.    乳酸菌重組載體之製備    23
| II-4-B.    乳酸菌NZ3900 勝任細胞之製備    23
| II-4-C.    電穿孔轉形    25
| II-4-D.    利用 PCR 確認插入乳酸菌重組載組之基因片段    25
| II-4-E.    DNA 序列比對    25
| II-5.    乳酸菌轉形株 NZ3900-carI    26
| II-5-A.    Nisin 對菌株 NZ3900-carI 之影響    26
| II-5-B.    質體穩定性    26
| II-5-C.  菌株 NZ3900 以不同劑量 Nisin 誘導
| Carrageenase胞內外酵素活性    26
| II-5-D.    菌株 NZ3900-carI 以不同功率超音波破細胞之條件    27
| II-5-E.    菌株 NZ3900-carI 以不同處理時間超音波
| 破細胞之條件    27
| II-5-F.    菌株 NZ3900-carI 在不同菌量濃度超音波破細胞
| 之條件    27
| II-5-G.    菌株 NZ3900-carI 經不同 Nisin 誘導之 mRNA    27
| II-5-H.    SDS-PAGE    28
| II-6.    乳酸菌轉形株 NZ3900-carI 之 Carrageenase
| 胞內粗酵素之生化特性    29
| II-6-A.    基質特異性    29
| II-6-B.    最適作用 pH 值    29
| II-6-C.    pH 值的安定性    29
| II-6-D.    最適作用溫度    29
| II-6-E.    熱安定性    30
| II-6-F.    金屬離子的影響    30
| III.        統計分析    30
| 伍、結果與討論    31
| I.    CarI 基因選殖之結果    31
| I-1.    MAEF 108 Carrageenase 基因的篩選    31
| I-2.    引子之設計    31
| I-3.    MAEF 108 所含 carI 之基因進行 TA-cloning
| 及限制酶選殖    31
| II.    乳酸菌轉殖株 NZ3900-carI    32
| II-1.    菌株 NZ3900-carI 之特性    32
| II-2.    菌株 NZ3900-carI 所產 Carrageenase 之測定    33
| III.    菌株 NZ3900-carI 所產 Carrageenase 生化特性    35
| III-1.    最適作用溫度及熱安定性    35
| III-2.    最適作用 pH 值及 pH 安定性    36
| III-3.    不同金屬離子之影響    37
| III-4.    基質特異性    38
| 陸、結論    39
| 柒、參考文獻    41
|
參考文獻: | 林慧傑。2010。Pseudomonas vesicularis MA103 所產 Alginate lyase palIII 之基因轉殖至大腸桿菌中表現之探討。國立臺灣海洋大學食品科學系碩士學位論文。基隆。臺灣。
| 吳欣蕙。2007。Pseudomonas vesicularis MA103 菌株所產 Agarases PV-1 與 PV-2 之純化與性質探討。國立臺灣海洋大學食品科學系碩士學位論文。基隆。臺灣。
| 吳紹祺。1999。海洋細菌所產 Agarases 生產條件與海藻多醣經 Agarase 分解所得寡醣類組成之探討。國立臺灣海洋大學食品科學系碩士學位論文。基隆。臺灣。
| 吳紹祺。2005。海藻多醣洋菜酶水解物及其發酵產物之生理活性研究。國立臺灣海洋大學食品科學系博士學位論文。基隆，臺灣。
| 吳鴻程、朱惠鈴、林盈君、郭建民。1998。鹽、膠質種類和蔗糖對鹿角菜膠布丁機械性質的影響。嘉南學報。24：117-125。
| 吳逸盈，2002。透抽肌肉中澱粉酶促進劑之純化與特性。國立臺灣海
| 洋大學食品科學系碩士學位論文。基隆。臺灣。
| 邱健人、魏琬櫻。1978。膠在食品工業上之應用(一)。食品工業 10 (11) : 36-42。
| 施姵岑。2009。石蓴寡醣之生產與其生理活性之探討。。國立臺灣海洋大學食品科學系碩士學位論文。基隆。臺灣。
| 郭宇星、潘道東。2008。超聲波破碎法提取瑞士乳桿菌氨肽酶條件的優化。食品科學。29: 140-144。
| 陳怡均。2001。Galectin-1 與Thioredoxin peroxidase II基因之選殖及表現。國立中央大學生命科學研究所碩士學位論文。桃園。臺灣。
| 陳柏璇。 2010。Aeromonas salmonicida MAEF108 之 Agarase AS-IIIb 基因轉殖至乳酸菌及乳酸菌發酵含山藥藻類寡醣乳製品之探討。國立臺灣海洋大學食品科學系碩士學位論文。基隆。臺灣。
| 許志維。2008。Aeromonas salmonicida MAEF108 所產 Agarase AS-IIIb 基因轉殖至大腸桿菌與酵母菌及其表現。國立臺灣海洋大學食品科學系碩士學位論文。基隆。臺灣。
| 彭必先。2001。卡拉膠製備反應用。明膠科學與技術。 4: 195-203。
| 葉娟美、許家榮。 2005。 以葡萄醣醛酸酶基因 gusA 為報告基因探討 nisin 調控表現系統於乳酸菌 Lactobacillus paracasei 之調控表現研究。臺灣農業化學與食品科學。43: 86-96。
| 梁鳳鈺。1999。Pseudomonas vesicularis MA103 菌株所產洋菜酶的純化與性質。國立臺灣海洋大學食品科學系碩士學位論文，基隆，臺灣。
| 黃萬滄。2001。人類 1-抗胰蛋白酶基因在哺乳類動物細胞及酵母菌中之表現。國立中興大學畜產學系碩士學位論文。臺中。臺灣。
| 廖啟成。1998。乳酸菌之分類應用。食品工業。30: 1-10。
| 潘彥齊。2010。Pseudomonas vesicularis MA103 所產-amylase Pv-AM-I純化與澱粉酶基因 Amy-00047轉殖至大腸桿菌及其特性分析。國立臺灣海洋大學食品科學系碩士學位論文。基隆。臺灣。
| 潘崇良、陳衍昌、 蔡震壽、方翠筠、黃意真、鄒文雄、林富邦、劉秀美、唐世杰。2009。海洋功能性醣體研究: 藻類多醣生質乙醇與丁醇及碳交易附加收入。國立臺灣海洋大學水產生物科技頂尖研究中心。基隆。臺灣。
| 劉綉婷。2008。 Pseudomonas vesicularis MA103 菌株所產 Agarase PV-1b 純化與基因選殖至大腸桿菌表現之探討。國立臺灣海洋大學食品科學系碩士學位論文。基隆。臺灣。
| 劉慧、熊利霞、李金錠、程雪、張紅星。2008。藏靈菇源乾酪乳桿菌 KL1 高產膽鹽水解酶發酵條件的優化研究。食品科學。24: 114-118。
| Araki, T., Higashimoto, Y. and Morishita, T. 1999. Purification and characterization of kappa-carrageenase from a marine bacterium, Vibrio sp. CA-1004. Fish. Sci. 65: 937-942
| Arnott, S. and Scott, W. E. 1974. -Carrageenan: Molecular structure and packin of polysaccharide double helices in oriented fibres of divalent cation salts. J. Mol. Biol. 90: 253-256.
| Barbeyron, T., Gerard, A. Potin, P., Henrissat, B. and Loareg, B. 1998. The  kappa-carrageenase of the marine bacterium Cytophaga drobachiensis. Structural and phylogenetic relationships within
| family-16 glycoside hydrolases. Mol. Biol. Evol. 15: 528-537.
| Barbeyron, T., Michel, G. Potin, P. Henrissat, B. and Kloareg, B. J. 2000. -Carrageenases constitute a novel family of glycoside hydrolases, unrelated to that of -carrageenases. Biol. Chem. 275: 35449-25505.
| Bernal, V. M., Smajda, C. H. Smith, J. L. and Stanley, D. W. 1987. Inteactions in protein/polysaccharide/calcium gel. J. Food Sci. 52: 1121-1125.
| Bernfeld, P. 1955. Amylase,  and  Methods Enzymol. 1: 149-158
| Bertani, G. 1951. Studies on lysogenesis. I. The mode of phage liberation by lysogenic Escherichia coli. J. Bacteriol. 62: 293-300.
| Caceres, P. J., Carlucci, M. J. Damonte, E. B. Matsuhiro, B. and Zuniga, E. A. 2000. Carrageenans from chilean samples of Stenogramme interrupta (Phyllophoraceae): structure analysis and biological activity. Phytochemical 53: 81-86.
| Carlucci M. J., Pujol, C. A. Ciancia, M. Noseda, M. D. Matulewicz M. C., Damonte, E. B. and Cerezo, A. S. 1997. Antiherpetic and anticoagulant properties of carrageenans from the red seaweed Gigartina skottsbergii and their cyclized derivatives: Correlation between structure and biological activity. Int. J. Biol. Macromol. 20: 97-105.
| Chandrapati, S. and O’Sullivan, D. J. 1999. Nisin independent induction of the nisA promoter in Lactococcus lactis during growth in lactose or galactose. FEMS Microbiol. Lett. 170: 191-198.
| Collen, P. N., Lemoine, M. Daniellou, R. Guegan, J. Paoletti, S. and Helbert, W. 2009. Enzymatic degradation of -carrageenan in aqueous solution. Biomacromolecules 10: 1757-1767.
| de Ruyter, P. G., Kuipers, O. P. Beerthuyzen, M. M. Alen-Boerrigter, I. and de Vos, W. M. 1996. Functional analysis of promoters in the nisin gene cluster of Lactococcus lactis. J. Bacteriol. 178: 3434-3439.
| Dyrset, N., Lystad, K. Q. and Levine , D. W. 1997. Development of a fermentation process for production of a [kappa]-carrageenase from Pseudomonas carrageenovora. Enzym. Microbiol. Technol. 6: 418-423.
| FAO/WHO (Food and Agriculture Organization of the United Nations and World Health Organization). 2001. Health and nutritional properties of probiotics in food including powder milk with live lactic acid bacteria. Report of a Joint FAO/WHO Expert Consultation, Cordoba, Argentina.
| Federle, M. J., and Bassler, B. L. 2003. Interspecies communication in bacteria. J. Clin. Invest. 112: 1291-1299.
| Fleurence, J., Massiani, L. Guyader, O. and Mabeau, S. 1995. Use of enzymatic cell wall degradation for improvement of protein extraction from Chondrus crispus, Gracilaria verrucosa and Palmaria palmata. J. Appl. Phycol. 7: 393-397.
| Hemar, Y., Hall, C. E. Munro, P. A. and Singh, H. 2002. Small and large deformation  rheology  and  microstructure  ofê-carrageenan  gels containing commercial milk protein products. Int. Dairy J. 12:  371-381.
| Invitrogen Corporation. 2002. pPICZ B Manual. http://tools.invitrogen.com/content/sfs/manuals/ppiczalpha_man.pdf (Down loaded in July 07, 2010, USA).
| Jhonston K. H. and McCandless, E. L. 1973. Enzymic hydrosis of the potassium chloride soluble fraction of carrageenan: Properties of -carrageenase from Pseudomonas carrageenovora. J. Microbiol. 19:  779-788.
| Khambhaty, Y., K. Mody and B. Jha. 2007. Purification and Characterization of -Carrageenase from a novel -Proteobacterium, Pseudomonas elongata (MTCC 5261) syn. Microbulbifer elongatus comb. Nov. Biotechnol. Bioprocess Eng. 12: 668-675
| Kleerebezem, M., Beerthuyzen, M. M., Vaughan, E. E., de Vos, W. M., and Kuipers, O. P.  1997. Controlled gene expression systems for lactic acid bacteria: Transferable nisin-inducible expression cassettes for Lactococcus, Leuconostoc, and Lactobacillus spp. App. Environ. Microbiol. 63: 4581-4584.
| Kobs, G.. 1988. Isolation of RNA from plant, yeast and bacteria. Promega Notes 8: 8-8.
| Kuipers, O. P., de Ruyter, P. G. G. A., Kleerebezem, M. and de Vos, W. M. 1998. Quorum sensing-controlled gene expression in lactic acid bacteria. J. Bacteriol. 64: 15-21.
| Li, X., Dong, X., Zhao, C. Chen, Z. and Chen, F. 2003. Isolation and some properties of cellulose-degrading Vibrio sp. LX-3 with agar-liquefying ability from soil. World J. Microbiol. Biotechnol. 19: 375-379
| Ma, Y. X., Dong, L. S., Jiang, X. L., Li, J. and Mou, H. J. 2010. Purification ation and charactertion of k-carrageenase from marine bacterium mutant strain Pseudoalteromonas sp. Aj5-13 and it’s degraded products. J. Food Biochem. 34: 661-678
| McKay, L. L., Baldwin, K. A. and Zottola, E. 1972. Loss of lactose metabolism in lactis streptococci. Appl. Microbiol. 23: 1090-1096.
| McLean, M. W. and Williamson, F. B. 1979. -Carrageenase from Pseudomonas carrageenovora. Eur. I. Biochem. 93: 553-558
| McLean, M. W. and Williamson, F. B. 1980. Enzymes from Pseudomonas carrageenovora. Application to studies of carrageenan structure. Proc. Int. Seaweed Symp. 10: 479-484.
| McLean, M. W. and Williamson, F. B. 1981. Neocarratetraose 4-0-monosulfate -hydrolase from Pseudomonas carrageenovora. Eur. J. Biochem. 113: 447-456.
| Michel, G., Chantalat, L. Fanchon, E. Henrissat, B. Kloareg, B. and Dideberg, O. 2001. The -Carrageenase of Alteromonas fortis. J. Boil. Chem. 276: 40202-40209.
| Michel, G., Flament, D. Barbeyron, T. Vernet, T. Kloareg, B. and Dideberg, O. 2000. Expression, purification, crystallization and preliminary X-ray analysis of the -carrageenase from Alteromonas fortis. Biol. Crystallogr. 56: 766-768.
| Michel, G., Flament, D. Barbeyron, T. Vernet, T. Kloareg, B. and Dideberg, O. 1998. Expression, purification, crystallization and preliminary X-ray analysis of the -carrageenase from Pseudoalteromonas carrageenovora. Biol. Crystallogr. 55: 918-920.
| Mierau, I., Leij, P. van Swam, I. Blommestein, B. Floris, E. Mond, J. and Smid, E. J. 2005. Industrial-scale production and purification of a heterologous protein in Lactococcus lactis using the nisin-controlled gene expression system NICE®: The case of lysostaphin. Microb. Cell Factor. 4: 15.
| Miller, G. L. 1959. Use of dinitrosalicylic acid reagent for reagent for deterimination of reduceing sugars. Anal. Chem. 31: 426-428.
| Panesar, P., Kennedy, J. F. Gandhi, D. N. and Bunko, K. 2007. Bioutilisation of whey for lactic acid production. Food Chem. 105: 1-14.
| Pecota, D. C., Kim, C. S. Wu, K. Gerdes, K. and Wood, T. K. 1997. Combining the hok/sok, parDE, and pnd postse gregational Killer  Loci to enhance plasmid stability. Appl. Environ. Microbiol. 63: 1917-1924.
| Potin, P., Sanseau, A., Gall, Y. L., Rochas, C. and Kloareg, B. 1991. Purification and characterization of a new -carrageenase from a marine Cytophaga-like bacterium. Eur. J. Biochem. 201: 241 -247
| Sambrook, J. and Russell, D. W. 2006. The Condensed Protocol from Molecular Cloning: A Laboratory Manual. Cold Spring Harbor Lab. Press, Cold Spring Harbor, NY, U.S.A. pp. 58-59, 177, 188-192, 243, 718-725, 730, 758-760.
| SAS (Satistical Analytical System). 1999. SAS Use’s: Basic statistical analysis. SAS Institute Inc., Cary North Carolina, U.S.A.
| Sarwar, G., Sakata, T. and Kasimoto, D. 1983. The production and characteristics of carrageenase from marine Cytophaga. Bull. Jpn. Sot. Sci. Fish. 49: 1689-1694.
| Sarwar, G., Oda, H. Sakata, T. and Kakimoto, D. 1987. Potentiality of artificial sea water salts for the production of carrageenase by a marine Cytophaga sp. Microbiol. Immunol. 31: 869-977.
| Stiles, M. E. and Holzapfel, W. H. 1997. Lactic acid bacteria of foods and their current taxonomy. Int. J. Food Microbiol. 36: 1-29.
| Suzuki, H., Sawai, Y. Suzuki, T. and Kawai, K. 2003. Purification and characterization of an extracellular β-agarase from Bacillus sp. MK03. J. Biosci. Bioeng. 95: 328-334.
| Tciboula, A. and Horne, D. S. 1999. Influence of whey protein denaturation one- Carrageenan gelation. Coll. Surf. 12: 299-308.
| Terzaghi, B. E. and Sandine, W. E. 1975. Improved medium for lactic
| Van den Ent, F. and Lowe, J. 2006. RF cloning: A restriction-free method for inserting target genes into plasmids. J. Biochem. Biophys. Meth. 67: 67-74.
| Van Kraaij, C., de Vos, W. M., Siezen, R. J. and Kuipers, O. P. 1999.  Lantibiotics: Biosynthesis, mode of action and applications.  Nat. Prod. Rep. 16: 575-587.
| Wang, Y. H., Yu, G. L. Wang, X. M. Lv, Z. H. Zhao, X. Wu, Z. H. and
| Ji, W. S. 2006. Purification and characterization of alginate lyase From marine Vibrio sp. YWA. Acta Biocchim. Biophys. Acad. Scient. 38: 633-638.
| Weigl, J. and Yaphe, W. 1966. The enzymatic hydrolysis of carrageenan by Pseudomonas carrageenovora: Purification of a -carrageenase. Can. J. Microbiol. 12: 939-947.
| Wells, J. M. and LePage, R. W. F. 1993. Improved cloning vectors and transformation procedure for Lactococcus lactis. J. Appl. Bacteriol. 74: 629-636.
| Wisselink, H. W., Weusthuis, R. A. Eggink, G. Hugenholtz, J. and Grobben, G. J. 2002. Mannitol production by lactic acid bacteria: A review. Int. Dairy J. 12: 151-161.
| Yook, C. and Robyt, J. F. 2002. Reactions of alpha amylases with starch granules in aqueous suspension giving products in solution and in a minimum amount of water giving products inside the granule. Carbohydr. Res. 337: 1113–1117.
| Zhou, M. H., Ma, J. H. Li, J. Ye1, H. R. Huang, K. X. and Zhao, X. W. 2008. A κ-carrageenase from a newly isolated Pseudoalteromonas-like bacterium, WZUC10. Biotechnol. Mater. Sci. 13: 545-551.
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2011 年 9 月 22 日 20:02